Žaizdų gydymas
Įrodyta, kad smūginių bangų terapija (ESWT) yra labai veiksminga gydant įvairias lėtinių ligų sukeltas žaizdas. Sergantiems cukriniu diabetu, lėtiniams odos pažeidimams ne tik žymiai sumažina gijimo laiką, bet ir pagerina žaizdų užsitraukimą bei audinių atsistatymą, o gijimo greitis beveik padvigubėja ir žaizdos dydis sumažėja maždaug 30%. Smūginės bangos terapija stimuliuoja kraujotaką ir naujų kapiliarų susidarymą, taip pat pasižymi ryškiu antibakteriniu ir priešuždegiminiu poveikiu. Gydant nudegimus ir atviras žaizdas, smūginių bangų priešuždegiminės savybės vaidina lemiamą vaidmenį pradinėse žaizdų gijimo stadijose, užtikrindamos sklandų ir greitą gijimą, ypatingai po nudegimo. Taip pagreitinamas gijimo procesas ir sumažinamas pakartotinės epitelizacijos laikas.
Fokusuotos smūginės bangos terapija ne tik smarkiai įtempia audinį staigiai padidėjus slėgiui, bet ir skatina ląstelių pralaidumą bei pagerina kraujo tiekimą. Ji aktyvina augimo faktorius, tokius kaip VEGF (endotelinis augimo faktorius), ir skatina ląstelių regeneraciją aktyvindama kamienines ląsteles. Be to, ši terapija suteikia antibakterinių ir priešuždegiminių savybių. Intensyvus audinių vientisumo jutiklių stimuliavimas mechanotransdukcijos jėgomis, kai jie veikiami smūginėmis bangomis, sukelia atsako prisitaikymą, iš esmės pakeičiant audinio savybes.
Limfedemos, dažnai susijusios su krūties vėžio operacija, atvejais, smūginė banga (ESWT) veiksmingai sumažina odos storį, o pacientai džiaugiasi minkštesniais audiniais, pagerėjusia jutimo funkcija ir reikšmingu skausmo sumažėjimu po gydymo.
Indikacijos
- Odos nudegimai
- Neuropatijos sukeltos opos
- Diabeto sukeltos opos
- Pragulų opos
- Žaizdos po operacijų
- Žaizdos po traumų
- Odos transplantatų ir atvartų gydymas
Poveikis
- Mikrocirkuliacijos sužadinimas (limfos, kraujo)
- Metabolizmo stimuliavimas (azoto oksido, vazodilatacijos, oksidacinio streso mažinimas)
- Endotelio azoto oksido sintazė
- Antibakterinis ir priešuždegiminis poveikis
- NO gamybą skatinantis mechaninis poveikis (NeNOS)
- Augimo faktoriaus aktyvinimas (VEGF)
- Kamieninių ląstelių stimuliavimas
Moksliniai šaltiniai
Antonic V, Mittermayr R, Schaden W, Stojadinovic A. Evidence supporting extracorporeal shock wave therapy for acute and chronic soft tissue wounds. Wounds Compend Clin Res Pract. 2011;23:204–15.
Mittermayr R, Antonic V, Hartinger J, Kaufmann H, Redl H, Téot L, Stojadinovic A, Schaden W. Extracorporeal shock wave therapy (ESWT) for wound healing: technology, mechanisms, and clinical efficacy. Wound Repair Regen. 2012;20:456–65.
Fioramonti P, Cigna E, Onesti MG, Fino P, Fallico N, Scuderi N. Extracorporeal shock wave therapy for the management of burn scars. Dermatol Surg. 2012;38:778–82.
d’Agostino MC, Craig K, Tibalt E, Respizzi S. Shock wave as biological therapeutic tool: from mechanical stimulation to recovery and healing, through mechanotransduction. Int J Surg. 2015;24:147–53.
Frairia R, Berta L. Biological effects of extracorporeal shock waves on fibroblasts. A review. Muscles Ligaments Tendons J. 2011;1:137–46.
Sukubo NG, Tibalt E, Respizzi S, Locati M, d’Agostino MC. Effect of shock waves on macrophages: a possible role in tissue regeneration and remodeling. Int J Surg. 2015;24:124–30.
Holfeld J, Tepeköylü C, Kozaryn R, Urbschat A, Zacharowski K, Grimm M, Paulus P. Shockwave therapy differentially stimulates endothelial cells: implications on the control of inflammation via toll-like receptor 3. Inflammation. 2014;37:65–70.
Schaden W, Thiele R, Kölpl C, Pusch M, Nissan A, Attinger CE, Maniscalco-Theberge ME, Peoples GE, Elster EA, Stojadinovic A. Shockwave therapy for acute and chronic soft tissue wounds: a phase II trial. J Surg Res. 2007;137:246.
Hatanaka K, Ito K, Shindo T, Kagaya Y, Ogata T, Eguchi K, Kurosawa R, Shimokawa H. Molecular mechanisms of the angiogenic effects of low-energy shock wave therapy: roles of mechanotransduction. Am J Physiol Cell Physiol. 2016;311:378–85.
Berta L, Fazzari A, Ficco AM, Enrica PM, Catalano MG, Frairia R. Extracorporeal shock waves enhance normal fibroblast proliferation in vitro and activate mRNA expression for TGF-beta1 and for collagen types I and III. Acta Orthop. 2009;80:612–7.
Zhao J-C, Zhang B-R, Shi K, Wang J, Yu Q-H, Yu J-A. Lower energy radial shock wave therapy improves characteristics of hypertrophic scar in a rabbit ear model. Exp Ther Med. 2018;15:933–9.
Kuo Y-R, Wu W-S, Hsieh Y-L, Wang F-S, Wang C-T, Chiang Y-C, Wang C-J. Extracorporeal shock wave enhanced extended skin flap tissue survival via increase of topical blood perfusion and associated with suppression of tissue pro-inflammation. J Surg Res. 2007;143:385–92.
Aschermann I, Noor S, Venturelli S, Sinnberg T, Mnich CD, Busch C. Extracorporal shock waves activate migration, proliferation and inflammatory pathways in fibroblasts and keratinocytes, and improve wound healing in an open-label, single-arm study in patients with therapy-refractory chronic leg ulcers. Cell Physiol Biochem. 2017;41:890–906.
Ottomann C, Stojadinovic A, Lavin PT, Gannon FH, Heggeness MH, Thiele R, Schaden W, Hartmann B. Prospective randomized phase II trial of accelerated reepithelialization of superficial second-degree burn wounds using extracorporeal shock wave therapy. Ann Surg. 2012;255:23–9.
Arnó A, García O, Hernán I, Sancho J, Acosta A, Barret JP. Extracorporeal shock waves, a new non-surgical method to treat severe burns. Burns. 2010;36:844–9.
Joo SY, Cho YS, Seo CH. The clinical utility of extracorporeal shock wave therapy for burn pruritus: a prospective, randomized, single-blind study. Burns. 2018;44:612–9.
Zhang L, Fu X, Chen S, Zhao Z, Schmitz C, Weng C. Efficacy and safety of extracorporeal shock wave therapy for acute and chronic soft tissue wounds: a systematic review and meta-analysis. Int Wound J. 2018;15:590–9.
Rinella L, Marano F, Berta L, Bosco O, Fraccalvieri M, Fortunati N, Frairia R, Catalano MG. Extracorporeal shock waves modulate myofibroblast differentiation of adipose-derived stem cells. Wound Repair Regen. 2016;24:275–86.
Fischer S, Mueller W, Schulte M, Kiefer J, Hirche C, Heimer S, Köllensperger E, Germann G, Reichenberger MA. Multiple extracorporeal shock wave therapy degrades capsular fibrosis after insertion of silicone implants. Ultrasound Med Biol. 2015;41:781–9.
Wang C-J, Ko J-Y, Chou W-Y, Cheng J-H, Kuo Y-R. Extracorporeal shockwave therapy for treatment of keloid scars. Wound Repair Regen. 2018;26:69–76.
Zhao J-C, Zhang B-R, Hong L, Shi K, Wu W-W, Yu J-A. Extracorporeal shock wave therapy with low-energy flux density inhibits hypertrophic scar formation in an animal model. Int J Mol Med. 2018;41:1931–8.
